试验方法_化学_自然科学_专业资料。土壤容重 （环刀法） ： 土壤容重是土壤在未破坏自然结构的情况下， 单位容积中土壤的重量， 通常以 g/cm3 表示。土壤容重大小反映土壤结构、透气性、透水性能以及保水能力的高低。 仪器：环刀（容积为

　　土壤容重 （环刀法） ： 土壤容重是土壤在未破坏自然结构的情况下， 单位容积中土壤的重量， 通常以 g/cm3 表示。土壤容重大小反映土壤结构、透气性、透水性能以及保水能力的高低。 仪器：环刀（容积为 100cm3）、天平（感量 0.1 克和 0.01 克）、烘箱、环刀托、小刀、 铁铲、橡胶锤、铝盒、干燥器等。 操作步骤：先在田间选择挖掘土壤剖面的位置，然后挖掘土壤剖面，观察面向阳。挖出 的土放在土坑两边。挖的深度一般是 1 米，如只测定耕作层土壤容重，则不必挖土壤剖面。 用修土刀修平土壤剖面，并记录剖面的形态特征，按剖面层次分层采样，每层重复 3 个。将 环刀托放在已知重量的环刀上，环刀内壁稍涂上凡士林，将环刀刃口向下垂直压入土中，直 至环刀筒中充满样品为止。若土层坚实，可用橡胶锤慢慢敲打，环刀压如时要平稳，用力一 致。用修土刀切开环刃周围的土样，取出已装上的环刀，细心削去环刀两端多余的土，并擦 净外面的土。同时在同层采样处用铝盒采样，测定自然含水量。把装有样品的环刀两端立即 加盖， 以免水分蒸发。 随即称重 （到 0.01 克） ， 并记录。 将环刀连同土样一起放入 105℃ 烘箱，烘 48 小时，干燥器冷却，沉重。 土壤容重=环刀内干土重/土壤（环刀）容积 田间持水量：用环刀在野外取原状土样（重复采样 3--5 个） ，带回室内浸泡水中，水面较环 刀上缘低 1—2mm，浸泡一夜。 在与测定土样相同的土层处另取一些土样，将其风干磨碎，通过孔径为 1mm 的筛子，装入 环刀， 轻拍结实， 并且使之稍微高出环刀口缘。 将装有饱和水分的原装土样的环刀的底盖 （有 多孔的）移去，把此环刀连同滤纸一起放在装有风干土样的环刀上。装有饱和水分的原装土 样的环刀的土盖应保持，以防止土壤蒸发。为使饱和的和风干的两个环刀接触紧密，可用砖 头压实（一对环刀用 3 块砖压） 。经过 8 小时吸水过程后，取上面环刀中的原装土 15--20g， 放入鋁盒，立即称重，准确至 0.01g，然后烘干，测含水量，此值接近于该土壤的田间持水 量 W。 W=（g2-g1）/g2 g2----湿土质量 g g1----干土质量 g 土壤有机质的测定： 在外加热条件下 （油浴温度 180℃， 沸腾 5 分钟） ， 用一定浓度的 K2Cr2O7 —H2SO4 溶液氧化土壤有机质（碳） ，剩余的 K2Cr2O7 用 FeSO4 滴定，从所消耗的 K2Cr2O7 量，计算有机碳的含量。 仪器：电炉，自动控温调节器，硬质试管，滴定管，铝锅等。 步骤：准确取过 100 目筛的风干土样 0.1000-1.0000g，放入一干燥硬质试管中，用滴定 管准确加入 0.4mol/L 1/6 K2Cr2O7—H2S O4 溶液 10ml （在加入 3ml 时摇动试管， 使土壤分散） ， 在试管口加一小漏斗，冷凝蒸出之水汽。 (平行测定 2—3 次，取平均值，允许误差±1%) 将试管放入铁丝笼（每次应有 1-2 个空白，当石蜡油浴锅中的温度升为 185~190℃时， 将铁丝笼放入，要求放入后油浴温度下降至 170-180℃左右，以后必须控制电炉，使油浴锅 内温度始终维持在 170-180℃。待试管内液体沸腾发生气泡时开始计时，煮沸 5min 后立即 取出试管，稍冷，擦净试管外部油液。 冷却后，将试管内物质倾入 250ml 三角瓶中，用水洗净试管内部及小漏斗，使三角瓶 内液体总体积在 60-70ml，保持混合液中 1/2 H2S O4 浓度为 2-3mol/L，然后加 2-羧基代二苯 胺指示剂 12-15 滴，此时溶液呈棕红色，用标准的 0.2mol/LFeSO4 滴定，滴定过程中不断摇 动，至溶液的颜色由棕红经紫色变为暗绿（灰蓝绿）即为滴定终点。如用邻啡罗啉，则加指 示剂 2-3 滴，溶液的变色过程有橙黄经蓝绿变为砖红色为终点。 每一批样品测定的同时，进行两个空白试验，即用灼烧过的土样代替土样，其他试剂和 操作完全相同。 土壤有机碳（g/kg）=【 （V0—V）×C×0.003×1.1/烘干土样质量 g 】×1000 土壤有机质（g/kg）= 土壤有机碳×1.724 V0——滴定空白时消耗的 FeSO4 ml V ——滴定土样时消耗的 FeSO4 ml C——FeSO4 标准溶液的的浓度 mol/L 0.003——1/4 碳原子的毫摩尔质量 g 土壤微生物量碳（MBC）的测定[氯仿熏蒸- K2SO4 提取–碳分析仪器法]： 1. 试剂 （1）去乙醇氯仿制：在通风橱中，将分析纯氯仿与蒸馏水按 1 ? 2（v : v）加入分液漏斗 中，充分摇动 1 min，慢慢放出底层氯仿于烧杯中，如此洗涤 3 次。得到的无乙醇氯仿(或再 加入无水氯化钙，以除去氯仿中的水分)。纯化后的氯仿置于试剂瓶中，在低温（4℃） 、黑 暗状态下保存，一般现配现用。 （2）1 mol· L-1 NaOH 溶液 （3）0.5 mol L-1 K2SO4 提取剂：取 1742.5 g 分析纯硫酸钾，用研钵磨成粉末状，倒于 25 L 塑料桶中，加蒸馏水至 20 L，盖紧螺旋盖置于摇床（150 r· min-1）上溶解 24 h 即可。 （4）六偏磷酸钠溶液[ρ （Na）= 5 g· 100 ml-1，pH 2.0]：称取 50.0 g 分析纯六偏磷酸钠溶于 800 ml 高纯度去离子水中，用分析纯浓磷酸调节至 pH 2.0，用高纯度去离子水定容至 1 L。 要注意的是六偏磷酸钠溶解速度很慢应提前配制； 由于其易粘于烧杯底部， 若加热常因受热 不均使烧杯破裂。 （5）过硫酸钾溶液[ρ （K2S2O8）= 2 g· 100 ml-1]：称取 20.0 g 分析纯过硫酸钾，溶于高纯度 去离子水中，定容至 1 L。值得注意是过硫酸钾溶液易被氧化，应避光存放且多使用 7 d。 （6）磷酸溶液[ρ （H3PO4）= 21 g 100 ml-1]：量取 37 ml 分析纯浓磷酸（85%） ，慢慢加入 到 188 ml 高纯度去离子水中即可。 （7）邻苯二甲酸氢钾标准溶液[ρ （）= 1000 mg C· L-1]） ：取 2.1254 g 经 105℃烘 2～3 h 的 分析纯邻苯二甲酸氢钾，溶于高纯度去离子水，定容至 1 L。 2. 仪器设 碳–自动分析仪（Phoenix 8000） 、振荡器（300 r min-1） 、可调加液器（50 ml） 、可调移液 器（5 ml） 、烧杯（盛滤液用） （50~100 ml） 、聚乙烯提取瓶（100，150 ml） ，聚乙烯塑料桶 （20 L，带螺旋盖） ，三角瓶（150 ml） 、其它常规仪器。 3. 操作步骤 （1）土样前处理：新鲜土壤应立即处理或保存于 4℃冰箱中，测定前先仔细除去土样中可 见植物残体（如根、茎和叶）及土壤动物（如蚯蚓等） ，过筛（孔径 2 mm） ，彻底混匀。 如果土壤过湿， 应在室内适当风干， 以手感湿润疏松但不结块为宜 （约为饱和持水量的 40%） 。 如果土壤过于干燥，用蒸馏水调节至饱和持水量的 40%。再将土壤置于密封的大塑料桶内 在 25℃条件下预培养 7～15 d，桶内有适量水以保持相对湿度为 ，并在桶内放一小杯 1 mol·L-1 NaOH 溶液以吸收土壤呼吸产生的 CO2。经过预培养的土壤应立即分析。如需保 留，应放置于 4℃的冷藏箱中，下次使用前需要在上述条件下至少培养 24 h。这些过程是为 了消除土壤水分限制对微生物的影响，以及植物残体对测定的干扰。 （2）熏蒸：称取经前处理后相当于 25.0 g（称量 28g 左右，如果同时测氮测多加土样）烘 干基重的新鲜土壤 3 份于 50 ml 烧杯中。将烧杯放入真空干燥器中，同时放入盛有去乙醇氯 仿 （约 2/3 烧杯+热水） 的烧杯 2～3 个， 烧杯内放入少量经浓硫酸处理洗涤后烘干的瓷片 （0.5 mm 大小，高低温冲击试验箱防瀑沸） ，干燥器底部加入少量热水和氯仿以保持湿度（水上放一张滤纸） 。用熏 蒸抽线 MPa 真空度下使氯仿剧烈沸腾 3～5 min。关闭真空干燥器阀 门，移置 25℃黑暗条件下熏蒸 24 h。将熏蒸过的土壤转移到另一个干净的真空干燥器中， 反复抽线 min，彻底除去土壤中的氯仿，直到无氯仿味为止。 否则，残留在土壤中的氯仿将影响分析结果。熏蒸的同时，另称取等量的土壤 3 份，置于另 一干燥器中，除不加入去乙醇氯仿进行熏蒸外，其他操作与熏蒸土壤一样，作为“对照”土 壤（一般不用熏蒸，直接称取 25g 培养土样，放入 4℃冰箱保存，与熏蒸土样同时测定） 。 （3） 浸提： 将熏蒸土壤 （25g） 无损地转移到 200 ml 聚乙烯提取瓶中， 加入 100(80) ml 0.5 mol L-1K2SO4，土水比为 1 : 4（w : v） ，振荡（25℃，300 r· min-1）浸提 30 min，用中速定量滤纸 过滤于 125 ml 塑料瓶中。同时，另称取等量的 3 份“对照”土壤于 200 ml 聚乙烯提取瓶中， 加入 100 ml 0.5 mol· L-1K2SO4 同上浸提。同时做 3 个不加土壤的试剂空白。浸提液应立即分 析，或在–18℃下保存。 （3）测定：取 10 ml 土壤提取液于 40 ml 样品瓶中（注意解冻的浸提液在取样前应充分摇 匀） ，加入 10 ml 六偏磷酸钠溶液（pH 2.0） ，使提取液中的沉淀（CaSO4 和 K2SO4）全部溶 解。 先采用 2 mm 细管向样液中通入高纯度氮气 5～10 min， 先除去溶解在样液中的部分 CO2， 样液再采用 Phoenix 8000 碳–自动分析仪测定样液中的有机碳含量。进入无机碳排除管进一 步排除残留的 CO2，进入紫外氧化室，在过硫酸钾溶液和磷酸溶液作用下样液中的有机碳全 部氧化为 CO2，产生的 CO2 经纯化后再通过红外检测器测定。详细操作步骤参见仪器使用说 明。 标准碳工作曲线 mg C·L-1 邻 苯二甲酸氢钾标准溶液于 100 ml 容量瓶中，用高纯度去离子水定容。高低温冲击试验箱即得到 0、20、40、 60、 80、 100 mg C· L-1 系列标准碳溶液。 分别吸取上述不同浓度度的标准碳溶液 10ml 于 40 ml 样品瓶中，按上述相同方法测定。 （4）结果计算：土壤微生物生物量碳：BC = EC / kEC 式中：EC = 熏蒸土壤提取的有机碳 – 不熏蒸土壤提取的有机碳；kEC 为转换系数，取 值 0.45。 称取25 g相当于烘干土壤质量的预培养湿润土壤于50 m1的玻璃瓶中， 与盛有50 m1氯仿 的玻璃瓶一起放入真空干燥器中， 抽线 min。 将干燥器放入25℃下24 h 后，再次抽真空至完全去除土壤中的氯仿。将土壤完全转移到200 ml塑料瓶中，加入50 m1 0．5 mol·LK2SO4溶液，充分振荡30 min过滤，迅速测定滤液中含碳量，或在低温下(一17 度)保存。熏蒸开始的同时，另称取等量土壤，加入0．5 mol/L K2SO4溶液浸提，测定滤液 中含碳量，并根据下式计算微生物量碳含量。 土壤微生物量碳Bc(mg·kg )=2．64 Ec，其中： 2．64 为微生物量碳系数，Ec 为熏蒸和未熏蒸土壤 K2SO4 提取液的碳含量的差值。 可溶性碳(DOC)的测定： 微生物量碳测定过程中未熏蒸的土样测定值即为土壤中可溶性碳的 含量。 团聚体：土壤大团聚体组成的测定 1 仪器 1 平口沉降筒，1000mL，带有橡皮塞。 2 水桶（搪瓷桶或铁桶），直径不小于40cm，高不小于45cm。 3 套筛， 高5cm， 直径20cm， 孔径分别为10mm、 7mm、 5mm、 2mm、 1mm、 0.5mm、 0.25mm， 共7个，高低温冲击试验箱有底和盖，并附有能装5个套筛的铁架子1个。 4 团聚体分析仪，手摇或电动，含4套筛子，每套有5个筛子，孔径分别为5mm、2mm、 1mm、0.5mm、0.25mm，电动团聚体分析仪在水中上下振荡速度为每分钟30次。 5 白铁盒或铝制盒，10cm×10cm×10cm 2 操作步骤 1 采样： 通常是采耕层土壤，根据需要也可分层采样。采样时要注意土壤的湿度，在 土不沾铲，接触不变形时为宜。用白铁盒或铝制盒在田间多点（3-5点）采集有代表性 的原状土样，高低温湿热试验箱以保持原来的结构状态。运输时要避免震动和翻倒。运回实验室内，沿 土壤的自然结构轻轻地剥开，将原状土剥成直径为10mm-12mm的小土块，同时防止外 力的作用而变形，并剔去粗根和小石块。将土样摊平，置于透气通风处，让其自然风 干。 2 干筛分析： 将风干的土样混匀，取其中一部分（一般不小于1kg，至0.01g）。用孔径分别 为10mm、7mm、5mm、2mm、1mm、0.5mm、0.25mm筛子进行筛分（筛子附有底和 盖） 。 筛完后， 将各级筛子上的团聚体及粒径0.25mm的土粒分别称量 （至0.01g） ， 计算干筛的各级团聚体占土样总量的百分含量。然后按其百分比，配成4份质量为50g （至0.01g）的土样，作湿筛分析使用。高低温湿热试验箱 3 湿筛分析： 在团聚体分析仪上进行湿筛分析，一次可同时分析 4 个土样。先将孔径为 5mm、 2mm、1mm、0.5mm、0.25mm 套筛用铁架夹住放入水桶中，再将称量的土样小心地 放入 1000mL 平口沉降筒中，用洗瓶沿筒壁徐徐加水(没过土样)，使土样湿润逐渐达到 饱和（目的是驱除团聚体内的闭塞空气），湿润 10min。小心沿沉降筒壁加满水，筒 口用橡皮塞塞紧，上、下倒转沉降筒，反复 10 次。然后将沉降筒倒置于水中的团聚体 分析仪的套筛上面，迅速在水中将塞子打开，轻轻晃动沉降筒，使之既不接触筛网， 也不离开水面。当粒径0.25mm 的团聚体全部沉到上部的套筛中时，在水中用手堵住 筒口，将沉降筒连同筒中的悬浮液一起取出，弃去悬浮液。然后在水中慢慢提起筛子， 再下降， 升降幅度为 3cm-4cm （注意上层的筛子不能露出水面） ， 反复 10 次 （或 30min， 30 下/min）后提出套筛，将筛组拆开。留在筛子上的各级团聚体用细水流通过漏斗分 别洗入白铁盒或铝制盒中，待澄清后倒去上面的清液，使各级团聚体自然风干，称量 （至 0.01g）（或在低温电热板上烘干，再在空气中平衡 2h 后称量）。 4 结果计算 非水稳定性大团聚体的质量百分数按（1）式计算，水稳定性大团聚体的质量百分数 按（2）式计算，水稳定性大团聚体的总质量百分数按（3）式计算： wi=mi/m×100??（1） 式（1）中： wi——某级非水稳定性大团聚体的质量百分数，%； mi——该级非水稳定性大团聚体的风干质量，g； m——风干土的质量，g。 wi=mj/m×100??（2） 式（2）中： wi——某级水稳定性大团聚体的质量百分数，%； mj——该级水稳定性大团聚体的风干质量，g； m——风干土的质量，g。 wi=Σ Wi??（3） 式（3）中： wGt——水稳定性大团聚体的总质量百分数，%； wGj——某级水稳定性大团聚体的质量百分数，%。 注：如土壤质地较轻，经干筛和湿筛后，各粒级中有大团聚体，也有石块、砾石和砂粒， 应将石块、砾石挑出，砂粒如太小可不必挑出。如这一层筛中全部为单个砂粒，这 些砂粒也应弃去，但结合在大团聚体中的砂粒与细砾不应挑出，应包括在大团聚体 中。计算时，土样的质量应扣除全部被挑出的石块、砾石和砂粒的质量，再换算出 各粒级团聚体的质量百分数。样品进行4份平行测定，取其算术平均值，取一位小 数。两份平行测定结果允许差为3%。 土壤团聚体分离方法 土壤团聚体分离方法是依据Mendes等、Sainju等和彭新华等的方法，并略作修改：田间采回 的原状土样(用硬质铝盒装好、保证不受挤压)，每个土样1 kg，在室温下风干，当土壤含水 量到土壤塑限 ( 含水量22％ ～ 25％左右 )时，用手轻轻地把大土块沿着自然脆弱带 (Failure zone)扳成不同大小的土壤团聚体，然后在室温条件下继续风干。把盛有土样的筛子置于摇 床(型号HY一5A)上，270 r/min 的转速下震荡2 min进行干筛(根据预试验结果，确定2 min 足够分离土壤各粒径团聚体)，分离出3 mm、l～3 mm、0．25～1 mm、0．05～0．25mm 和0．05 mm土壤团聚体，然后仔细剔除各粒径团聚体中的根系，用。 约德文法：孔径为10、5、2、1、0.5、0.25mm的土壤筛一套，1/100天平、称量瓶、団粒分 析仪、鋁盒、干燥器、喷水壶、洗瓶、土铲、小土壤刀、小刷、酒精、漏斗及架、电热板、 烘箱。 样品的采取及处理：包括田间采集和室内剥样 1、 通常是采耕层土壤，根据需要也可分层采样。采样时要注意土壤的湿度，在 不沾铲，接触不变形时为宜。土壤过干时，可用喷水壶缓慢浇些水，待水分渗入而土壤稍干 时采取。采样时，尽量不使土块挤压，保持原来的结构。剥去土块外面直接与土铲接触而变 形的土块，均匀取土。 2、 室内将土块剥成2cm大小的土块，除去根和小石块。剥样时沿土壤的自然结构而轻 轻的用小刀挑开，尽量避免土块挤压、破碎。 3、 先将土样分3级，5,5—2,2mm,称重，然后按比例取包括各级団粒（0.25--10mm） 的风干土样50g（3份），其中一份测含水率。 将套筛按顺序10、5、2、1、0.5、0.25mm固定，并置于水桶中，桶内水达到固定高度， 使上面筛子的上缘不漏出水面；将土样放入套筛内。开动马达，使套筛在水中震荡30min； 将套筛缓慢拿出，待水稍干，用洗瓶轻轻冲洗上面的筛子，把留在筛子上小于10mm的团 聚体洗到下面筛中，冲洗时不要把团聚体冲坏。然后将留在筛子上的团聚体洗入鋁盒。 倾倒鋁盒中的清液，然后放在电热板上蒸干，然后置105℃烘箱内，烘干2小时，取出置 于干燥器内稍冷，称量，计算。 微团聚体组成的测定—吸管法 1 仪器 1 振荡机。 2 土壤颗粒分析吸管 3 搅拌棒。 4 量筒，1000mL 5 土壤筛，孔径2mm、1mm、0.5mm。 6 烧杯，50mL，200mL。 7 洗筛，直径6cm，孔径0.25mm。 8 锥形瓶，500mL 2 操作步骤 称取通过 2mm 筛孔的 10g（至 0.001g）风干土样置于 500mL 锥形瓶中，加入 200mL 水，加塞浸泡 24h，然后在振荡机上振荡 2h。在 1000mL 量筒上放一大漏斗，在 量筒口放一个孔径 0.25mm 洗筛，将悬浮液通过筛孔洗入量筒中，留在锥形瓶内的土粒， 用水全部洗入洗筛内，注意切不可用橡皮头玻璃棒洗擦土粒，以免破坏微团聚体，后 将量筒内的悬浮液用水加至 1000mL。 将盛有悬浮液的1000mL量筒放在温度变化较小的平稳试验台上，避免振动，避免阳 光直接照射。 将留在洗筛内的砂粒洗入已知质量的 50mL 烧杯（至 0.001g）中，烧杯置于低 温电热板上蒸去大部分水分，然后放入烘箱中，于 105℃烘 6h，再在干燥器中冷却后称 至恒量（至 0.001g）。0.25mm 砂粒通过 1.0、0.5mm 筛，分别移入铝盒，烘干称 重，计算砂粒(2~1、1~0.5、0.5~0.25mm)量。 同时取温度计悬挂在盛有1000mL水的1000mL量筒中， 并将量筒与待测悬浮液量筒放 在一起，记录水温（℃），即代表悬浮液的温度 根据悬浮液的温度、土壤密度与颗粒直径，按土壤颗粒分析吸管法吸取各粒级时间表， 吸取各粒级颗粒。 各粒级称量：将盛有各粒级悬浮液的烧杯置于低温电热板上蒸去大部分水分，然后 放入烘箱中，于105℃烘6h，高低温湿热试验箱再在干燥器中冷却后称至恒量（至0.001g）。 水分换算系数的测定：称取通过2mm筛孔的10g（至0.001g）风干土样，置于已 知质量的50mL烧杯（至0.001g）中，将烧杯放入烘箱，在105℃烘6h，再在干燥器中 冷却后称至恒量（至0.001g），计算土壤水分换算系数。 3 结果计算 3.1 土壤水分换算系数按式（1）计算： K=m1/m??（1） 式（1）中： K——水分换算系数； m——烘干土质量，g； m1——风干土质量，g。 烘干土质量（g）=风干土质量（g）×K 3.2 小于0.05mm粒级含量按式（2）计算： 0.05mm粒级以下，小于某粒级含量（%）=m2/m×1000/V×100??（2） 式（2）中： m——烘干土质量，g； m2——吸取悬浮液中小于某粒级质量，g； V——吸取小于某粒级的悬浮液体积，mL； 1000——悬浮液总体积，mL。 3.3 各粒级含量按（3）、（4）、（5）、（6）式计算： 0.05~0.02mm粒级含量(%) =小于0.05mm粒级含量(%)–小于0.02mm粒级含量(%)??(3) 0.02mm~0.002mm粒级含量(%) =小于0.02mm粒级含量(%)–小于0.002mm粒级含量(%)??(4) 0.25mm~0.05mm粒级含量（%） =100–[0.25mm粒级含量（%）+0.05mm~0.02mm粒级含量（%）+0.02mm~0.002mm 粒级含量（%）+小于0.002mm粒级含量（%）]??（5） 大于0.25mm粒级含量（%）=m3/m×100??（6） 式（6）中： m——烘干土质量，g； m3——大于0.25mm粒级质量，g。 3.4 土壤分散系数按式（7）计算： 分散系数（%）=a/b×100??（7） 式（7）中： a——土壤微团聚体测定结果中小于0.002mm粒级含量，%； b——土壤颗粒组成测定结果中小于0.002mm粒级含量，%。 3.5 土壤结构系数按式（8）计算： 结构系数（%）=100–分散系数（%）??（8） 注： 分散系数和结构系数的测定结果只供研究和鉴定土壤形成水稳定性团聚体的能力及 土壤微团聚体稳定性时参考，这些计算公式只适用于壤土组和粘土组等重质地土 壤，而在砂土组中，土壤结构系数在一定程度上是无实际意义的。 4 允许差 样品进行两份平行测定，取其算术平均值，取一位小数。两份平行测定结果允许差 为2%。 5 参考文献 [1] LY/T 1226-1999. 森林土壤微团聚体组成的测定。 [2] 孙鸿烈，刘光崧.土壤理化分析与剖面描述. 北京：中国标准出版社. 1996，8 1.团聚体水稳性系数= O．25 mm水稳性团聚体(湿筛)／ 0．25 mm 风干团聚体(干筛) ×100 愈大表示土壤结构体稳定性愈强 2.结构系数=(O．001mm颗粒—O．001 mm微团聚体)／0．001mm颗粒)×100％ 3.分散率=(0．05mm微团聚体／0．05mm颗粒)×100 4.团聚状况= 0．05mm微团聚体—0．05mm颗粒 5.结构体破坏率=100×0．25mm团粒(干筛—湿筛)／ 0．25mm团粒(干筛) 愈大则 土壤结构稳定性愈差。 6.团聚体平均重量直径(Mean Weight Diameter MWD)： 即每一粒级团聚体平均直径(mm) 与其重量百分含量(％)乘积之和， 其值愈大表示结构性愈好(研究表明， 不同粒径团聚体有机 碳含量与平均重量直径之间存在线形关系，平均重量直径随着有机碳含量的增加而增大， Van Bavel在1949年就已经提出将平均重量直径当作土壤团聚体分布及稳定性的指标，是一 种比较简便的方法，并得到广泛应用（Van Bavel C H M，1949）)。
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